Nanoscale Regulation of Cell Surface Receptors in Plants

Worum geht's

Du lernst Grundlagen der Signalübertragung in Pflanzenzellen und wie Plasmamembran-Nanoorganisation und -Dynamik biologische Prozesse steuern. Praktisch erwirbst Du Fertigkeiten in variabler Winkel-TIRF-Mikroskopie, Einzelmolekül‑ und Super‑Resolution‑Imaging sowie in bioassays zur Überwachung pflanzlicher Immunantworten; am Ende kannst Du Experimente planen, durchführen, analysieren und wissenschaftlich dokumentieren.

Was du danach kannst

Erklären und Anwenden zentraler experimenteller Techniken der Pflanzenzellbiologie
Bedienen einer variable-angle TIRF-Mikroskopie und Durchführung von Super‑Resolution-Experimenten
Durchführen und Analysieren von Live‑Cell Einzelmolekül‑Imaging
Verarbeiten und Auswerten von Bio‑Imaging‑Daten mit R und Python
Durchführen einfacher Immunblotting‑Versuche und Bioassays zur Immunitätsüberwachung
Kritische Interpretation und Integration von Ergebnissen aus verschiedenen Methoden
Dokumentation von Versuchsabläufen und Ergebnissen in einem strukturierten Bericht

Aus was das Modul besteht

VorlesungEinführung in Techniken und biologischen Hintergrund (2 SWS)
Praktikum / Hands-onPraktische Durchführung der Experimente in Kleingruppen (3 SWS)
Selbststudium / BerichtserstellungGeführte Phase zur Ausarbeitung und Abgabe des individuellen Laborberichts

Lehrmethode

Kurze TheorieeinheitenVermittlung des notwendigen Hintergrunds vor dem praktischen Arbeiten
Hands-on Übungen in Kleingruppen (2 Personen)Praktische Anwendung und Training der Labor- und Mikroskopietechniken
Geführtes Selbststudium für BerichtVerknüpfung von Theorie und Praxis sowie Schulung wissenschaftlicher Dokumentation

Solltest du schon können

Grundlegende Laborfertigkeiten (Pipettieren, Puffer-/Lösungszubereitung)empfohlen
Grundkenntnisse zu Proteinbiologie und Fluoreszenzmikroskopieempfohlen

Prüfung

LaborberichtPraktische Leistung

Die Modulprüfung besteht aus zwei Teilen: a) erfolgreicher Abschluss von zwei praktischen Experimenten (z. B. Super‑Resolution‑Mikroskopie oder Immunblotting) und b) einer individuellen schriftlichen Laborarbeit (5–7 Seiten), die zwei Wochen nach dem letzten Labortag einzureichen ist. Die Reportinhalte: biologischer Hintergrund, zentrale Forschungsfrage, Methodenbeschreibung, Ergebnisse, Diskussion, Schlussfolgerungen und Ausblick. Note setzt sich aus praktischer Leistung und Bericht im Verhältnis 1:1 zusammen.

Literatur

Lichtman J., Conchello J.A. - Fluorescence microscopy.
Vergish S., Wolf R., Song W.Y. - Simplified Protocol to Demonstrate Gene Expression in Nicotiana benthamiana Using an Agrobacterium-Mediated Transient Assay.
Schermelleh L., Ferrand A., Huser T. et al. - Super-resolution microscopy demystified.
Lelek M., Gyparaki M.T., Beliu G. et al. - Single-molecule localization microscopy.
DeFalco T. et al. - Molecular mechanisms of early plant pattern-triggered immune signaling.

Termine

ÜbungNanoscale Regulation of Cell Surface Receptors in Plants (UE)5 Gruppen zur Wahl

ADi.09:00–17:00
HU24, Seminarraum Biologie (4214.U1.024)
2× · 20.10.–27.10.
- 20.10.
- 27.10.
BDo.09:00–17:00
HU24, Seminarraum Biologie (4214.U1.024)
2× · 22.10.–29.10.
- 22.10.
- 29.10.
CFr.09:00–17:00
HU24, Seminarraum Biologie (4214.U1.024)
2× · 23.10.–30.10.
- 23.10.
- 30.10.
DMi.09:00–17:00
HU24, Seminarraum Biologie (4214.U1.024)
2× · 21.10.–28.10.
- 21.10.
- 28.10.
EMo.09:00–17:00
HU24, Seminarraum Biologie (4214.U1.024)
2× · 19.10.–26.10.
- 19.10.
- 26.10.

Aus dem laufenden Semester, unverbindlich. Von mehreren Gruppen besucht man eine; der Stundenplan schlägt automatisch die mit den wenigsten Überschneidungen vor.

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